铁胁迫对微囊藻毒素合成酶McyC和McyI表达的影响

王飞, 曾晓丽, 张承才

王飞, 曾晓丽, 张承才. 铁胁迫对微囊藻毒素合成酶McyC和McyI表达的影响[J]. 水生生物学报, 2023, 47(7): 1036-1041. DOI: 10.7541/2023.2022.0217
引用本文: 王飞, 曾晓丽, 张承才. 铁胁迫对微囊藻毒素合成酶McyC和McyI表达的影响[J]. 水生生物学报, 2023, 47(7): 1036-1041. DOI: 10.7541/2023.2022.0217
WANG Fei, ZENG Xiao-Li, ZHANG Cheng-Cai. IRON STRESS ON THE EXPRESSION OF MICROCYSTIN SYNTHETASE MCYC AND MCYI[J]. ACTA HYDROBIOLOGICA SINICA, 2023, 47(7): 1036-1041. DOI: 10.7541/2023.2022.0217
Citation: WANG Fei, ZENG Xiao-Li, ZHANG Cheng-Cai. IRON STRESS ON THE EXPRESSION OF MICROCYSTIN SYNTHETASE MCYC AND MCYI[J]. ACTA HYDROBIOLOGICA SINICA, 2023, 47(7): 1036-1041. DOI: 10.7541/2023.2022.0217

铁胁迫对微囊藻毒素合成酶McyC和McyI表达的影响

基金项目: 国家重点研发计划资助(2018YFA0903100)
详细信息
    作者简介:

    王飞(1994—), 男, 硕士研究生; 研究方向为藻类生长与发育。E-mail: Flyme2017@163.com

    通信作者:

    张承才, 研究员, 博士生导师; E-mail: cczhang@ihb.ac.cn

  • 中图分类号: Q178.1;Q344+.1

IRON STRESS ON THE EXPRESSION OF MICROCYSTIN SYNTHETASE MCYC AND MCYI

Funds: Supported by the National Key R&D Program of China (2018YFA0903100)
    Corresponding author:
  • 摘要: 为研究微囊藻毒素合成酶基因的蛋白表达水平与环境因子间的关系, 文章以位于微囊藻毒素合成基因簇两个操纵子中的mcyCmcyI基因为代表, 利用制备的高效McyC和McyI多克隆抗体, 采用Western Blot技术检测了铁胁迫对微囊藻毒素合成酶McyC和McyI蛋白表达水平的影响。研究结果表明, 在铁胁迫下, 铜绿微囊藻PCC 7806藻细胞内McyC和McyI的蛋白水平变化趋势一致, 且与相同条件下藻细胞内毒素的合成产量变化一致, 暗示铁胁迫直接通过影响微囊藻毒素合成酶的表达水平调控毒素的合成。研究为进一步了解微囊藻毒素的合成机制提供了基础材料。
    Abstract: Microcystin is a class of cyclic hepatotoxin, which poses a great threat to human and animal health. Microcystin synthesis is regulated by a variety of environmental factors, and the synthesis efficiency of microcystin is directly determined by the amount of the corresponding synthetase and the catalytic rate, however, the relationship between protein expression levels of the microcystin synthesis gene cluster and environmental factors is still unclear. In this study, the mcyC and mcyI genes located in the two operons of the microcystin synthesis gene cluster were selected as representatives, using high-efficiency McyC and McyI polyclonal antibodies, detected the effect of iron stress on microcystin synthetase McyC and McyI protein expression levels by Western Blot. The result indicated that the protein levels of McyC and McyI within Microcystis aeruginosa PCC 7806 were consistent with the changes in the synthesis yield of toxins in vivo under iron stress, suggested that iron stress directly regulates the synthesis of the toxin by influencing the expression level of microcystin synthetase. This study provided the basis for further understanding the synthesis mechanism of microcystin.
  • 近年来, 我国极为重视水产养殖环境污染和发展之间关系, 并以绿色发展为理念, 积极通过实施“五大行动”推进水产绿色健康养殖。氨氮是鱼类蛋白质分解代谢的最终产物, 主要通过鳃排泄到周围环境中[13]。水体中氨氮以离子氨(NH4)和非离子氨(NH3)两种形式存在, 其中, NH3具有很好的脂溶性, 能够自由地穿过生物膜, 对鱼类毒性较大; 而NH4只能通过离子交换进入生物体内, 对鱼类的毒性相对较小[4]。随着集约化养殖的发展, 大量残饵及粪便在水体中积累并转化为氨氮, 使得养殖环境中氨氮含量迅速升高。高浓度的氨氮对鱼类的发育、生长和繁殖造成严重威胁, 特别是在鱼类的早期生长阶段[57]。为解决氨氮对水产绿色健康养殖发展的制约, 氨氮胁迫对鱼类应激和健康的影响越来越受到人们的关注。

    氨氮最先通过鳃上皮细胞进入鳃组织, 使鳃组织严重病变, 导致鳃组织出现坏死、溶血、血红蛋白缺乏、耗氧量减少和呼吸障碍[8, 9]。进入体内的氨氮可以直接影响生物体内物质代谢以及损伤神经系统, 从而引起应激反应影响机体的健康[3, 10, 11]。氨氮也可影响细胞内的NO和Ca2+浓度, 导致自由基的产生, 进而使得DNA和类固醇组件损伤、酶失活和脂质过氧化等, 最终造成生物体各种生理病变[1216]。近年来研究表明, 氨氮对鱼类抗氧化系统的影响根据鱼种类和氨暴露浓度不同而有所差异: 氨氮暴露会导致鱼类体内超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化氢酶(CAT)和谷胱甘肽过氧化物酶(GPx)活性激活, 抵抗氨氮氧化胁迫[1720]; 氨氮暴露也可抑制鱼体抗氧化系统, 使得SOD和CAT活力随着氨氮浓度的升高而下降[21]。此外, 当鱼类处于应激状态, 其特异性和非特异性免疫防御体系的功能也会受到不同程度的影响, 导致机体对各类病原敏感性的升高[2225]。大菱鲆(Scophthalmus maximus)幼鱼在氨氮暴露后, 肿瘤坏死因子α(TNFα)和白细胞介素1β(IL1β)基因表达水平均显著性上调, 溶菌酶(LYZ)表达水平显著性下调, 干扰先天性免疫反应[26]。相似地, 氨氮暴露可诱导河豚(Takifugu obscurus)肝脏中B细胞因子、tnfαil-6il-12的转录表达水平升高[27]。氨氮暴露也可以提高鱼体内LYZ活力和补体(C3, C4)含量以及免疫球蛋白水平, 促进机体免疫应答[28, 29]。综上所述, 氨氮作为重要的水环境因子, 其对鱼类抗氧化系统和免疫系统的危害不可忽视。鱼类早期的生命阶段比成鱼对外界环境因子的影响更加敏感, 特别是其抗氧化和免疫系统还处于较低水平[30]。然而, 目前关于氨氮对鱼类的抗氧化和免疫的影响主要集中在幼鱼和成鱼阶段, 关于刚孵化出膜的仔鱼对氨氮胁迫响应机制的研究还非常缺乏, 特别是不同种类的仔鱼暴露在氨氮环境中响应差异的研究。

    鲢(Hypophthalmichthys molitrix)、草鱼(Ctenopharyngodon idella)、团头鲂(Megalobrama amblycephala)和黄颡鱼(Pelteobagrus fulvidraco)都是我国重要的经济养殖鱼类, 它们因其肉质鲜美、生长速度快、经济价值高而受到人民的青睐, 其人工繁殖对满足水产养殖需求至关重要[31]。其中, 鲢为滤食杂食性, 产漂流性卵; 草鱼和团头鲂均为草食性, 但草鱼产漂流性卵, 团头鲂产黏性卵; 黄颡鱼为肉食性, 产沉性卵。由于它们的食性不同, 使得它们成为开展本研究绝佳的实验对象。本研究从免疫与抗氧化的角度, 探讨氨氮对鲢、草鱼、团头鲂和黄颡鱼仔鱼氧化应激和免疫的影响及其分子机制的差异, 以期探究鱼类早期发育过程中的氧化应激和免疫系统在鱼类抵抗外源环境因子影响中的响应模式, 为全面评估和解析氨氮对鱼类的危害以及苗种培育技术提升提供一定的理论依据。

    鲢、草鱼、团头鲂和黄颡鱼仔鱼(出膜后24h)由湖南省田家湖渔业科技有限责任公司提供; 实验所用的塑料鱼缸(32 cm×22 cm×17 cm)和培养皿(直径10 cm)购自武汉迪跃生物; 游标卡尺(0—150 mm, 上海恒量量具有限公司); HQ40D水质分析仪(哈希, 美国); 总蛋白浓度, 补体C3、溶菌酶(LYZ)、总抗氧化能力(T-AOC)、丙二醛(MDA)的含量及谷胱甘肽过氧化物酶(GPx)、超氧化物歧化酶(SOD)和过氧化氢酶(CAT)的活力所用检测试剂盒购自南京建成生物工程研究所; TRIzol试剂购自TaKaRa(中国大连); Hifair® Ⅲ 1st Strand cDNA Synthesis SuperMix for qPCR (gDNA digeater plus)和HifairTM qPCR SYB® Green Mater Mix (No Rox)的试剂盒购自上海翊圣生物科技有限公司。氯化铵(NH4Cl, 国药, 99.5%), MS-222购自Sigma-Aldrich公司(美国), 其他所用试剂均为分析纯。

    半致死浓度(LC50)测定实验在湖南省华容县田家湖渔业科技有限责任公司进行。选用基地驯化多年的成鱼亲本(鲢、草鱼、团头鲂和黄颡鱼)分别进行人工催产受精, 采集同一批健康孵化出膜的仔鱼作为实验对象。制备1 g/L的氨标准储备液(氯化铵配制), 分别稀释成1、2、4、6、8 和10 mg/L共6个浓度组的氨氮溶液(以总氨氮计), 对照组为24h曝气自来水。半致死浓度测定选用直径100 mm培养皿, 每个培养皿放入100条仔鱼, 每个浓度5个平行, 分别在暴露前(0)和暴露后3h、6h、12h、24h、48h、72h和96h记录各个浓度组的死亡数量, 最后利用SPSS 22.0计算半致死浓度。

    根据半致死浓度结果, 设置1个对照组和3个暴露组, 氨氮浓度分别为0 (24h 曝气自来水), 1 mg/L (25% LC50), 2 mg/L (50% LC50), 3 mg/L (75% LC50), 每个浓度组3个平行培养缸。每个缸放入1500条鱼苗, 暴露96h后进行样品的采集, 实验期间每24h更换相同浓度的NH4Cl溶液, 使浓度保持在设置浓度的±20%以内, 并每隔3h查看, 及时利用胶头滴管吸出死亡的鱼苗, 防止污染实验缸水环境。实验期间鲢和草鱼水温为(24±0.2)℃, 团头鲂和黄颡鱼水温为(25.1±0.2)℃左右, 溶解氧均>5 mg/L, pH为8.8±0.2, 根据Emerson等[32]描述的方法计算实际水体中非离子氨(NH3)浓度:

    非离子氨(NH3)=总氨氮/[1+10(pKa-pH)]

    式中, pKa=0.09018+2729.92/T(T=273+t℃)。

    采集样品前用浓度为200 mg/L的MS-222麻醉实验仔鱼, 每个浓度组随机取40尾仔鱼利用游标卡尺测量体长。对每个浓度组, 随机选取200条仔鱼混合在一起作为1个平行样, 液氮速冻后保存于–80℃用作酶活性和蛋白含量检测, 共6个平行; 随机选取20条仔鱼混在一起作为1个平行样, 放入液氮速冻后保存于–80℃冰箱中保存, 用于RNA提取和基因表达测定, 共6个平行。

    采用南京建成生物工程研究所生化试剂盒测定匀浆中补体C3、LYZ、T-AOC、MDA的含量及GPx、SOD和CAT的活力。

    采用RNAiso Plus试剂(TaKaRa, 大连)提取总RNA, 利用PrimeScriptTM RT Reagent Kit with gDNA Eraser (TaKaRa, 大连)反转录成cDNA, 用于实时荧光定量PCR分析。qPCR的引物序列运用Primer Premier 5.0软件设计和参考相关文献(表 1)。根据试剂盒操作说明, 利用SYBR Premix Ex TaqⅡ(TaKaRa, 大连)进行qPCR反应, 扩增程序为: 95℃预变性5min, 然后变性95℃ 10s, 退火58℃ 20s, 延伸72℃ 20s, 共40个循环。实验采用 β-actin作为内参基因, 2–∆∆Ct方法计算相对表达量(R)[33]

    表  1  实时荧光定量PCR引物序列
    Table  1.  Primer sequences for qPCR
    鱼种
    Species
    目的基因
    Target gene
    引物序列
    Primer sequences (5′—3′)
    登录号/参考文献
    Accession number/Reference
    草鱼
    C. i.
    白细胞介素1β(il1β)CACAACCTTCCCACCAAT
    GCCGTGCTAATAAACCATC
    JQ692172
    肿瘤坏死因子α (tnfα)GGAGACAAACTGCTCACCGA
    TGACTGCAGTGGAAGCTCAG
    HQ696609
    补体3(c3)ACGGCCTTTGTTGTGATTGC
    TTGGTCAGTCGTGGAAGTCG
    AY374472
    过氧化氢酶(cat)GAAGTTCTACACCGATGAGG
    CCAGAAATCCCAAACCAT
    FJ560431
    谷胱甘肽过氧化物酶(gpx)GGGCTGGTTATTCTGGGC
    AGGCGATGTCATTCCTGTTC
    EU828796
    铜锌超氧化物歧化酶(cuznsod)TTGGAGACAATACAAATGGGTG
    CATCGGAATCGGCAGTCA
    GU901214
    肌动蛋白(β-actin)CTCGCTCTGCAGGTATGGAG
    TTCATTGTGCTAGGGGCCAG
    M25013

    H. m.
    白细胞介素1β(il1β)TCTGATGAGATGGGCTGCTC
    CTGGCACATTTCCACCTGCTC
    [34]
    肿瘤坏死因子α (tnfα)CAAACCGGAGACAGACTGCT
    TTGCAGTGGAAGCTCAGGAG
    FJ913063
    补体3(c3)CGCTTGTGAAGGCCAAAGAC
    CCTGTGTGGTACCAGAACCG
    AM773827
    过氧化氢酶(cat)TGAGTCTGGGTCGGCAGATA
    TCCGGATCCTTCAGGTGAGT
    HM230689
    谷胱甘肽过氧化物酶(gpx)GAGCCCAAATCCCAGCTTCT
    CGGGCCAATGAGGAACTTCT
    EU108012
    铜锌超氧化物歧化酶(cuznsod)TCTCGGGTGAAATCACTGGC
    TGATGCAGCCGTTTGTGTTG
    HM469964
    肌动蛋白(β-actin)TGGATCGGAGGTTCCATCCT
    TGGTCCAGACTCGTCGTACT
    AF301605
    团头鲂
    M. a.
    白细胞介素1β (il1β)ACGATAAGACCAGCACGACC
    CTGTTTCCGTCTCTCAGCGT
    KF515511
    肿瘤坏死因子α (tnfα)TCCAAGGCAGCCATCCATTT
    GCCTGAAGAGAAAGCCTGGT
    KF515512
    补体3(c3)ACGGCCTTTGTTGTGATTGC
    CGTCATCGCAACAGCGTAAG
    KP192115
    过氧化氢酶(cat)GTTTCCGTCCTTCATCCACTCT
    GACCAGTTTGAAAGTGTGCGAT
    KF378714
    谷胱甘肽过氧化物酶(gpx)CTTTTGTCCTTGAAGTATGTCC CTTGAGGAAGACGAAGAGAGGGKF378713
    铜锌超氧化物歧化酶(cuznsod)TCAGCGTGAACCATCCACAA
    GACAACAGACCGGCCAAGTA
    KF479046
    肌动蛋白(β-actin)ACCCACACCGTGCCCATCTA
    CGGACAATTTCTCTTTCGGCTG
    AY170122
    黄颡鱼
    P. f.
    白细胞介素1β (il1β)TGGAATGGAGCGCTTCCTTT
    GAACCAGCCCGGGTATTTCA
    JQ730738
    肿瘤坏死因子α(tnfα)ATCAGGTGAACGCTGATGCT
    GTGTTGAGGGAAGGGGTCTG
    XM027141814
    补体3(c3)GGTGTCGGAAGGTGTGCTAA
    CTGACCAGCCACCATGATGT
    XM027136454
    过氧化氢酶(cat)AAGGCAACCCTGTCTACTGC
    TTGTACAGGTCACGGATGGC
    KX455919
    谷胱甘肽过氧化物酶(gpx)TATGACCTGCGTGCTACCAC
    TGGTGCCTCATAGTGATGCC
    XM027155811
    铜锌超氧化物歧化酶(cuznsod)TTGGAGACAATACAAATGGGTG
    CATCGGAATCGGCAGTCA
    XM027176836
    肌动蛋白(β-actin)GTACCACCATGTACCCTGGC
    GTGCCTTTCATTCAGCCACC
    EU161065
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    实验数据采用使用SPSS 22.0(Chicago, USA)对体长指标进行单因素方差分析(One-Way ANOVA), 随后采用Duncan进行多重比较。采用双因素方差分析(Two-Way ANOVA)方法对实验中其他数据(T-AOC、MDA、SOD、CAT、GPx、LYZ、C3及相关的基因)进行分析, 随后采用Duncan进行多重比较, 差异显著水平均设为P<0.05。

    经SPSS分析, 鲢仔鱼96h总氨暴露的LC50为4.089 mg/L (NH3为0.697 mg/L), 草鱼仔鱼为4.276 mg/L (NH3为0.801 mg/L), 团头鲂仔鱼为3.718 mg/L (NH3为1.142 mg/L), 黄颡鱼仔鱼为3.699 mg/L (NH3为1.136 mg/L)。

    在氨氮暴露后, 4种不同鱼类仔鱼的体长随着氨氮暴露浓度增加而降低(图 1)。与对照组相比, 所有氨氮暴露组中鲢、草鱼和黄颡鱼仔鱼体长均显著降低(P<0.05), 其最高降幅依次为7.31%、18.71%和10.32%; 而团头鲂仔鱼体长显著降低仅出现在2和3 mg/L氨氮处理组(P<0.05), 最高下降了5.22%。

    图  1  氨氮暴露对4种仔鱼体长的影响
    结果以均值±标准误(n=40)的形式表示, 不同字母代表组间差异显著(P<0.05); 下同
    Figure  1.  Effects of total ammonia nitrogen on body length of four species of fish larvae
    Data are shown as mean±SE (n=40), different small letters mean significant differences among different treatment groups (P<0.05). The same applies below

    氨氮暴露导致4种不同鱼类仔鱼的T-AOC活力降低(图 2A)。与对照组相比, 2和3 mg/L氨氮胁迫导致鲢仔鱼、草鱼仔鱼和团头鲂仔鱼的T-AOC显著降低(P<0.05), 其最高降幅分别为9.02%、17.36%和22.62%; 所有氨氮处理组中黄颡鱼仔鱼T-AOC均显著降低(P<0.05), 最高下降了19.43%。相对地, 氨氮暴露仅导致团头鲂仔鱼体内MDA含量显著性升高(P<0.05; 图 2B)。

    图  2  氨氮暴露对4种仔鱼总抗氧化能力(A)和丙二醛(B)的影响
    Figure  2.  Effects of total ammonia nitrogen on total antioxidant capacity (A) and malondialdehyde (B) of four species of fish larvae (n=6)

    鲢仔鱼SOD活力在氨氮暴露后升高, 但没有表现出显著性变化(P>0.05), 但2和3 mg/L氨氮胁迫显著降低了草鱼仔鱼、团头鲂仔鱼和黄颡鱼仔鱼体内SOD活性, 其最高降幅分别为17.81%、14.79%和23.98% (P<0.05; 图 3A)。在基因水平上, 2和3 mg/L氨氮处理导致鲢仔鱼cuznsod表达水平的显著性下调(P<0.05; 图 3B)。

    图  3  氨氮暴露对4种仔鱼抗氧化酶含量和基因表达的影响
    A. 超氧化物歧化酶; B. 铜锌超氧化物歧化酶基因表达; C. 过氧化氢酶; D. 过氧化氢酶基因表达; E. 谷胱甘肽过氧化物酶; F. 谷胱甘肽过氧化物酶基因表达
    Figure  3.  Effects of total ammonia nitrogen on antioxidant enzymatic activity and gene expression of four species of fish larvae (n=6)
    A. Superoxide dismutase (SOD) activity; B. The relavtive expression of cuznsod; C. Catalase (CAT) activity; D. The relavtive expression of cat; E. Glutathione peroxidase (GPx) activity; F. The relavtive expression of gpx

    图 3C所示, 氨氮胁迫导致4种仔鱼的CAT活力降低。与对照组相比, 3 mg/L氨氮处理组中鲢仔鱼和黄颡鱼仔鱼体内CAT活性分别降低了41.14%和64.12% (P<0.05), 而草鱼仔鱼和团头鲂仔鱼CAT活性在2和3 mg/L氨氮组均显著下降, 最高降幅分别为45.01%和47.12% (P<0.05)。氨氮的胁迫并未造成4种仔鱼cat转录水平发生显著改变(P>0.05; 图 3D)。

    4种仔鱼GPx的活性在氨氮胁迫后均降低(图 3E)。与对照组相比, 1和2 mg/L氨氮处理导致鲢仔鱼GPx活性显著性降低了34.48%和23.21% (P<0.05); 2和3 mg/L氨氮处理导致草鱼仔鱼GPx活性显著降低了27.51%和43.12% (P<0.05); 而团头鲂仔鱼GPx活性仅在3 mg/L氨氮处理组显著降低了55.73% (P<0.05); 仅黄颡鱼仔鱼GPx活性在3个处理组中均显著性降低, 最高降幅为56.04% (P<0.05)。与对照相比, 仅黄颡鱼基因gpx转录水平在3个氨氮处理组均显著性下调(P<0.05), 且降幅超过52.23% (图 3F)。

    与对照组相比, 氨氮暴露导致草鱼仔鱼体内LYZ含量显著降低(P<0.05), 但未造成鲢仔鱼和团头鲂仔鱼体内LYZ含量出现显著性变化(P>0.05)。然而, 2 mg/L处理组黄颡鱼仔鱼LYZ含量增加显著(P<0.05; 图 4A)。如图 4B所示, 氨氮暴露对鲢、草鱼、团头鲂和黄颡鱼4种仔鱼体内补体C3含量均无显著性影响(P>0.05)。

    图  4  氨氮暴露对4种仔鱼溶菌酶和补体C3含量的影响
    Figure  4.  Effects of total ammonia nitrogen on the contents of lysozyme (A) and complement C3 (B) of four species of fish larvae (n=6)

    在氨氮暴露后, 除了鲢仔鱼il1β基因表达呈现下降趋势, 4种鱼仔鱼所有检测基因(il1β tnfαc3)均呈现上升趋势(图 5)。与对照组相比, 3 mg/L氨氮暴露导致tnfα基因表达在鲢、草鱼、团头鲂和黄颡鱼仔鱼体内分别显著升高了206.12%、79.67%、416.44%和267.18%(P<0.05)。同时, 3 mg/L氨氮暴露导致草鱼和团头鲂仔鱼体内il1β基因表达显著上升55.41%和2701.84%; 鲢体内显著下降51.17%(P<0.05); 而黄颡鱼仔鱼体内il1β基因表达在2和3 mg/L暴露下显著增加205%和773.68% (P<0.05)。3 mg/L氨氮诱导黄颡鱼仔鱼c3基因表达显著上升275.43%, 而2和3 mg/L氨氮均在鲢、团头鲂和草鱼仔鱼中诱导c3表达显著升高(P<0.05), 其最高涨幅分别为177.04%、374.61%和112.99%。

    图  5  氨氮暴露对4种仔鱼相关基因表达量的影响
    A. 肿瘤坏死因子α基因表达; B. 白细胞介素1β基因表达; C. 补体3基因表达
    Figure  5.  Effects of ammonia nitrogen on relative mRNA expression of four species of fish larvae (n=6)
    A. The relative expression of tnfα; B. The relative expression of il1β; C. The relative expression of c3 (P<0.05)

    双因素方差分析结果显示, 氨氮对所有抗氧化酶活性、免疫指标以及免疫相关基因均有显著影响(P<0.05), 不同种类仔鱼(鲢、草鱼、团头鲂和黄颡鱼)的T-AOC、CAT、GPx、C3和基因sodgpxil1β、c3之间差异显著(P<0.05), 而鱼种和氨氮互作效应仅对C3和基因gpxtnfα、il1β、c3影响显著(P<0.05; 表 2)。对于交互作用显著的指标, 我们通过单因素方差分析进一步解析了同一氨暴露下鱼种之间的差异 (表 3), 结果显示: 在无氨氮的对照组, 鲢和草鱼仔鱼体内C3含量显著高于黄颡鱼和团头鲂仔鱼(P<0.05), 而基因gpxtnfα、il1βc3 mRNA表达水平在4种仔鱼间没有显著差异; 在低浓度氨氮(1 mg/L)处理条件下, 黄颡鱼仔鱼c3tnfα转录水平显著低于鲢和草鱼仔鱼, 其il1β基因转录水平显著低于鲢和团头鲂仔鱼(P<0.05), 而在高浓度氨氮(3 mg/L)处理下, 黄颡鱼仔鱼c3转录水平显著高于鲢和团头鲂仔鱼, il1β转录水平显著高于鲢和草鱼仔鱼, tnfα基因转录水平显著高于草鱼仔鱼(P<0.05; 表 3)。

    表  2  氨氮和鱼的种类双因素对仔鱼抗氧化酶和先天性免疫指标的影响
    Table  2.  Effects of ammonia and species on antioxidant enzyme of different feeding habits fish larvae
    指标Index主效应 P值Major impact P-value
    鱼种类
    Fish species
    氨氮浓度
    Ammonia concentration
    鱼种类×氨氮浓度
    Fish species×Ammonia concentration
    总抗氧化T-AOC<0.001<0.0010.150
    丙二醛MDA0.2880.0370.916
    超氧化物歧化酶SOD0.972<0.0010.149
    过氧化氢酶CAT<0.0010.0030.080
    谷胱甘肽过氧化物酶GPx<0.001<0.0010.087
    溶菌酶LYZ0.315<0.0010.219
    补体3C30.001<0.0010.027
    铜/锌超氧化物歧化酶基因cuzusod0.0010.5400.113
    过氧化氢酶基因cat0.1580.5800.302
    谷胱甘肽过氧化物酶基因gpx<0.0010.6730.015
    肿瘤坏死因子α基因tnfα0.124<0.0010.001
    白细胞介素1β基因il1β<0.001<0.001<0.001
    补体3基因c3<0.001<0.001<0.001
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    表  3  氨氮暴露下4种仔鱼之间C3含量及基因c3gpxil1βtnfα转录水平变化
    Table  3.  The changes of C3 levels and c3, il1β, tnfα translation among four species of fish larvae after ammonia exposure
    指标Index氨氮
    Ammonia nitrogen (mg/L)
    鱼种Species
    H.m.草鱼 C.i.团头鲂 M.a.黄颡鱼 P.f.
    补体3含量
    C3
    0179.01±17.61a212.13±27.95a105.94±3.51b92.35±0.69b
    1 146.38±12.48b211.40±16.76a129.45±17.20bc81.05±7.02c
    2 171.57±10.33b244.82±35.29a115.24±6.20bc75.99±1.29 c
    3 138.91±5.61ab207.25±38.14a122.51±26.30b82.44±4.14b
    补体3基因
    c3
    0 1.03±0.101.19±0.251.01±0.041.25±0.36
    1 1.43±0.26ab1.74±0.05a1.15±0.11bc0.70±0.07c
    2 2.85±0.333.07±0.242.15±0.262.06±0.58
    3 2.37±0.23bc3.99±0.80ab2.12±0.19c4.69±1.02a
    谷胱甘肽过氧化物酶
    gpx
    0 1.05±0.151.01±0.091.04±0.161.04±0.12
    1 1.11±0.22a0.94±0.07b1.23±0.16b0.50±0.14b
    2 1.49±0.22a1.16±0.03b1.23±0.12b0.33±0.06b
    3 1.45±0.25a1.18±0.06b1.39±0.05b0.30±0.09b
    白细胞介素1β基因
    il1β
    0 1.16±0.300.96±0.311.07±0.121.02±0.44
    1 0.89±0.11a0.29±0.09b0.94±0.25a0.40±0.04b
    2 0.88±0.12b0.94±0.25b3.04±0.47a4.21±1.19a
    3 0.57±0.05c2.12±0.30c29.98±5.31a12.06±2.78b
    肿瘤坏死因子α基因
    tnfα
    0 1.04±0.151.14±0.281.20±0.241.07±0.48
    1 0.95±0.18a1.23±0.11a0.88±0.09ab0.49±0.21b
    2 1.68±0.381.48±0.230.73±0.351.81±0.79
    3 3.79±1.15ab2.05±0.28b6.20±1.14a5.47±1.40a
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    苗种培育是制约养殖后期发展的重要阶段, 在保障人工繁殖鱼苗孵化率的同时, 需要特别重视出膜后仔鱼的生长发育。其中, 仔鱼的生长发育是评价人工繁殖是否成功以及优良品种选育的重要时期, 因为仔鱼往往对外界环境较为敏感, 易受到环境因素(氨氮、亚硝酸盐和温度)的影响, 例如氨氮进入鱼体后能破坏脑中枢神经系统, 影响鱼的摄食和食物吸收, 进而抑制鱼的生长[15, 21, 35, 36]。Foss等[35]发现, 长期氨氮胁迫导致大菱鲆幼鱼特定生长率和增重率降低。Li 等[15]研究指出, 高浓度氨氮(26.88 mg/L)暴露明显抑制了黄颡鱼的摄食、生长及饲料转化效率。在本实验中, 氨氮暴露使4种仔鱼体长生长显著减缓, 且随着氨氮浓度升高体长呈现剂量依赖性下降, 表明氨氮胁迫对鱼类早期生长发育造成一定的负面影响, 其中氨氮暴露对生长影响最显著的是草鱼和黄颡鱼。相似地, 尼罗罗非鱼(Oreochromis niloticus)受精卵暴露于0.05—0.6 mg/L的氨氮20d和60d后, 死亡率与对照组相比显著性上升, 且高浓度氨氮暴露时, 仔鱼表现出各种生理反应, 其中包括体长生长减缓, 脊柱弯曲、卵黄囊缩小等[36]。Segner和Verreth[37]研究也指出, 鱼卵较大的鱼类(例如鲑)可以维持较长时间的卵黄囊期, 可以支持其生长至较大的仔鱼。相比之下, 卵和仔鱼较小的海鱼品种, 在外源喂养开始时器官发育不完全[38, 39]

    鱼类的生长和鱼体的健康密不可分, 而鱼类抗氧化系统和氧化系统之间的平衡往往是评价鱼类健康的重要指标, 因为多种环境污染物的毒性机制之一是过量生成的活性氧(ROS)引起氧化应激[4042]。MDA是脂质过氧化的重要标志之一。此外,T-AOC是衡量机体抗氧化酶系统和非酶系统功能强弱的综合性指标。MDA和T-AOC水平的动态变化可以充分反应机体氧化应激状态[43, 44]。急性氨氮暴露能导致罗非鱼肌肉和肝脏ROS含量增加, 并造成相应的氧化损伤[17], 且高浓度氨氮易导致鱼体内MDA的积累[18, 45]。在本研究中, 随着氨氮浓度升高, 4种鱼体内T-AOC含量显著降低, 而MDA含量都有一定的上升, 表明氨氮的暴露导致鱼体抗氧化能力的减弱, 造成了氧化应激损伤。抗氧化能力在不同种类的鱼之间会有很大的差异, 这可能与它们对引起氧化损伤的外源污染物的抵抗力不同有关[46, 47]。通过显著性分析和双因素方差分析发现, 不同仔鱼之间T-AOC含量差异显著, 并且氨氮对于不同仔鱼T-AOC含量均具有显著抑制作用, 其中对黄颡鱼仔鱼T-AOC削弱程度最大, 其次是团头鲂仔鱼, 初步表明鲢和草鱼仔鱼的氨耐受性较强。

    细胞内ROS水平由相互作用的抗氧化防御体系协同控制[17, 48], 抗氧化酶活性的增加表明氧化应激的发生和清除生成的ROS的适应性反应, 而其活性的降低则暗示其抗氧化防御能力的破坏。在本实验中, 氨氮暴露导致4种仔鱼的抗氧化酶SOD、CAT和GPx的活性和基因转录水平出现不同程度的下降, 进一步证实氨氮的暴露造成了氧化应激损伤, 进而削弱了其抗氧化能力。我们研究还发现, 氨氮暴露后4种仔鱼中仅鲢仔鱼体内SOD含量未出现显著性变化, 而CAT和GPx 活力显著性降低, 表明鲢仔鱼不依赖SOD作为抵抗氨介导的ROS。与我们结果相似的, 刚孵化鲢体内SOD的活力在NH3 (0.06—0.264 mg/L)暴露3d和7d后没有受到显著影响[31]。本实验中草鱼、团头鲂和黄颡鱼仔鱼的SOD、CAT和GPx均显著性下降, 且黄颡鱼gpx基因的转录水平在氨氮暴露后也显著下调, 表明这3种鱼的抗氧化酶SOD、CAT和GPx都参与氨氮胁迫下ROS的清除。Chen等[49]研究发现, 氨氮(NH3: 0.176—0.879 mg/L)暴露草鱼卵至神经胚和孵化, 可使其SOD水平显著下降。Zhang等[50]研究结果揭示, 20 mg/L总氨氮长期暴露导致团头鲂幼鱼(14.27±0.01) g肝脏中SOD、CAT和GPx活性显著降低。同样, 黄颡鱼在氨氮暴露后其SOD、CAT和GPx活力也显著性下降[15, 21]。在正常情况下, 细胞内ROS可被SOD分解为H2O2, CAT和GPx可催化H2O2形成水和分子态氧, 所以SOD在抗氧化防御过程中起到首要地位[51, 52]。本实验发现, 氨氮处理后鲢仔鱼体内SOD活性显著高于其他3种仔鱼, 这可能是鲢仔鱼较其他3种仔鱼耐氨氮性强的原因。双因素方差分析进一步显示, 与对照组相比, 氨氮胁迫导致黄颡鱼仔鱼抗氧化酶降低的程度最大, 其次是草鱼和团头鲂仔鱼, 另一方面4种仔鱼自身之间抗氧化酶CAT和GPx活性就有显著差异, 而不同鱼抗氧化应激的响应能力可能与它们食性相关[53, 54]。姜丹莉[54]研究发现, 草食性草鱼和肉食性青鱼捕捞后肝脏糖含量下降, 而杂食性银鲫(Carassiusautatus gibelio)捕捞后肝糖原含量未发生显著变化, 其血浆葡萄糖和乳酸浓度增幅较小, 表明银鲫的捕捞应激反应强度低于草鱼和青鱼。综上所述, 在氨氮暴露下, 鲢仔鱼抗氧化能力最高, 耐氨氮能力最强; 黄颡鱼仔鱼抗氧化能力最低, 耐氨氮能力最低。

    鱼类生活的水环境病原体复杂多变, 病原体会增加宿主免疫系统功能障碍, 因此集约化养殖中氨氮对鱼类免疫影响已成为热点问题[29, 55], 而鱼类先天性免疫被认为是抵抗外界病原体的第一道防线[56, 57]。溶菌酶在生物体中广泛存在, 其转录水平或者活力是鱼类先天免疫的重要指标。章琼[60]研究报道, 72h氨氮(20 mg/L)急性胁迫导致团头鲂成鱼鳃组织中溶菌酶基因表达量显著下降, 免疫系统功能减弱。相似地, 急性氨氮暴露也造成瓦氏黄颡鱼成鱼血清中溶菌酶含量显著性降低, 导致免疫系统功能减弱[61]。同样, 长期氨氮(5.56—5.80 mg/L)暴露导致黄颡鱼幼鱼(1.94±0.05) g肝脏中溶菌酶活性显著降低[62]。相反, 黄颡鱼在氨氮(5.70 mg/L)3h短期急性暴露后, 肝脏中溶菌酶呈现显著性上升[15]。在本研究中, 氨氮暴露后鲢和团头鲂仔鱼LYZ含量没有显著变化, 但草鱼鲂仔鱼中显著下降, 而黄颡鱼中显著升高, 可见氨氮胁迫导致4种仔鱼呈现差异性免疫响应, 草鱼表现为免疫反应抑制, 黄颡鱼表现为免疫反应兴奋, 而鲢和团头鲂免疫反应未受影响。本实验双因素方差分析显示, 氨氮对LYZ含量影响显著, 但是4种仔鱼体内LYZ之间没有显著差异。鱼类的补体可裂解外界细胞, 对外来生物产生调节作用, 其中补体C3在补体级联反应中起着核心作用[58, 59]。在本研究中, 氨氮暴露未导致C3含量在4种仔鱼中出现显著变化, 但c3基因表达呈现显著升高。相似地, 高浓度氨氮(10 mg/L)急性胁迫24h后, 团头鲂成鱼血清中C3和C4含量没有显著变化[63]。同样, 在24h急性氨暴露后, 草鱼成鱼血清中C3含量无显著变化[64]。综合以上结果表明, 氨氮暴露下4种仔鱼通过提高C3基因表达量维持体内C3含量恒定。

    细胞因子家族中il1βtnfα被视为重要的促炎细胞因子, 在受到外界损伤时作为几种免疫反应的中间因素参与炎症反应[6568]。氨氮(10 mg/L)急性胁迫导致鲫(Carassius auratus)肝脏中tnfαil1β表达升高[66], 表明机体发生了炎症反应。同样, 急性氨氮暴露也可诱导河豚(Takifugu obscurus)和翘嘴鳜(Siniperca chuatsi)肝脏中tnfα表达升高[70, 71]。此外, 急性96h氨氮(0.14和0.28 mg/L)胁迫导致黄颡鱼头肾巨噬细胞il1tnf基因相对表达量显著下降[72]。在本研究中, 3 mg/L氨氮处理导致4种仔鱼体内tnfα基因表达量均显著升高, 且其在鲢和草鱼仔鱼体内的涨幅低于团头鲂和黄颡鱼仔鱼, 表明团头鲂和黄颡鱼仔鱼可能较其他两种仔鱼对氨耐受性弱。与tnfα表达结果相似, 氨氮暴露导致草鱼仔鱼、团头鲂仔鱼和黄颡鱼仔鱼il1β表达显著升高, 且黄颡鱼仔鱼中il1β表达对氨胁迫表现更加敏感, 但鲢仔鱼体内il1β表达显著下降。双因素方差分析表明, 同一氨氮浓度下4种仔鱼之间tnfαil1β表达存在显著差异, 黄颡鱼仔鱼体内免疫炎症因子(tnfαil1β)在低浓度氨氮(1 mg/L)下表达量较低, 但在高浓度氨氮(3 mg/L)条件下表达量较高, 而鲢和草鱼仔鱼却表现出相反趋势。由此可见, 氨氮暴露干扰了4种仔鱼免疫反应, 引发炎症反应, 其中黄颡鱼仔鱼和团头鲂仔鱼较其他两种仔鱼对氨耐受性更弱。

    氨氮胁迫导致4种不同食性鱼类仔鱼产生氧化应激和免疫炎症响应, 损害机体内酶的平衡, 降低仔鱼的抗氧化能力和先天性免疫功能, 影响基因的转录水平和酶的合成, 导致生长迟缓甚至死亡。在抗氧化和免疫对氨氮耐受性方面, 鲢仔鱼的抗性最强, 其次是草鱼和团头鲂仔鱼, 而黄颡鱼仔鱼抵抗力较弱。鉴于此, 苗种培育阶段应该重视水体中氨氮浓度控制, 特别是在肉食性黄颡鱼仔鱼的培育过程。

  • 图  1   McyC和McyI蛋白的表达与纯化

    A. McyC蛋白(148 kD)初纯化; B. McyI蛋白(37 kD)初纯化; C. 高纯度McyC(泳道1)和McyI(泳道2); M. marker; UI. 诱导前细胞总蛋白; FL. 流穿液; P. 去上清后的细胞沉淀; W20. 含20 mmol/L咪唑缓冲液洗杂; E1—E2. 洗脱蛋白

    Figure  1.   Expression and purification of the recombinant McyC and McyI

    A. SDS-PAGE of initial purification for McyC (148 kD) by affinity coloum; B. SDS-PAGE of initial purification for McyI by affinity coloum and McyI proteins (37 kD); C. McyC (lane 1) and McyI (lane 2) for antibody preparation; M. Marker; UI. un-induced; FL. Filtration; P. pellet; W20. wash by buffer contain 20 mmol/L imidazole; E1—E2. elution by buffer contain 250 mmol/L imidazole

    图  2   多克隆抗体效价免疫印迹检测

    图中1、5、10、50、100和200分别表示1、5、10、50、100和200 ng抗原蛋白

    Figure  2.   Western Blot for titer determination of polyclonal antibody

    1, 5, 10, 50, 100 and 200 indicate 1, 5, 10, 50, 100 and 200 ng antigen protein, respectively

    图  3   铜绿微囊藻PCC 7806胞内McyC和McyI蛋白免疫印迹检测

    A. McyC的检测; B. McyI的检测; C. McyC抗原抗体拮抗检测; M. 蛋白marker; 1. 10 ng 重组纯化蛋白; 2. 微囊藻总蛋白

    Figure  3.   Western blotting for McyC and McyI in Microcystis aeruginosa PCC7806

    A. McyC; B. McyI; C. McyC antibody-antigen control test; M. protein marker; Line 1. 10 ng McyC protein; Line 2. total protein of Microcystis

    图  4   铁胁迫对铜绿微囊藻McyC和McyI蛋白表达的影响

    泳道1—5分别为微囊藻缺铁培养0、1d、3d、5d和7d的细胞总蛋白. M. 蛋白marker; CBB. 考马斯亮蓝染色; C. 大肠杆菌纯化蛋白对照

    Figure  4.   The effect of iron stress on the expression of McyC and McyI in Microcystis aeruginosa

    Line 1—5 indicate Microcystis culture under iron deficiency in 0, 1d, 3d, 5d and 7d, respectively. M. protein marker; CBB. Coomassie Blue Staining; C. antigen control

  • [1]

    Stanier R Y, Cohen-Bazire G. Phototrophic Prokaryotes: The Cyanobacteria [J]. Annual Review of Microbiology, 1977, 31(1): 225. doi: 10.1146/annurev.mi.31.100177.001301

    [2]

    Paerl H W, Otten T G. Harmful cyanobacterial blooms: causes, consequences, and controls [J]. Microbial ecology, 2013, 65(4): 995-1010. doi: 10.1007/s00248-012-0159-y

    [3]

    Fristachi A, Sinclair J L, Hall S, et al. Occurrence of cyanobacterial Harmful Algal Blooms Workgroup Report [M]. Cyanobacterial Harmful Algal Blooms: State of the Science and Research Needs. Springer, New York, NY, 2008: 45-103.

    [4]

    Parra O O, Ugarte E, Mora S, et al. Remarks on a bloom of Microcystis aeruginosa Kützing [J]. Nova Hedwigia, 1980(33): 971-990.

    [5]

    Tillett D, Dittmann E, Erhard M, et al. Structural organization of microcystin biosynthesis in Microcystis aeruginosa PCC7806: an integrated peptide–polyketide synthetase system [J]. Chemistry & Biology, 2000, 7(10): 753-764.

    [6]

    Díez-Quijada L, Prieto A I, Guzmán-Guillén R, et al. Occurrence and toxicity of microcystin congeners other than MC-LR and MC-RR: A review [J]. Food and Chemical Toxicology, 2019(125): 106-132. doi: 10.1016/j.fct.2018.12.042

    [7]

    Meyer S, Kehr J C, Mainz A, et al. Biochemical dissection of the natural diversification of microcystin provides lessons for synthetic biology of NRPS [J]. Cell Chemical Biology, 2016, 23(4): 462-471. doi: 10.1016/j.chembiol.2016.03.011

    [8]

    Dittmann E, Wiegand C. Cyanobacterial toxins–occurrence, biosynthesis and impact on human affairs [J]. Molecular Nutrition & Food Research, 2006, 50(1): 7-17.

    [9]

    Claudia D, Hans-Peter G, Anthony G J. Increasing oxygen radicals and water temperature select for toxic Microcystis sp [J]. PLoS One, 2011, 6(9): e25569. doi: 10.1371/journal.pone.0025569

    [10]

    van der Westhuizen A J, Eloff J N. Effect of temperature and light on the toxicity and growth of the blue-green alga Microcystis aeruginosa (UV-006) [J]. Planta. 1985 Jan; 163(1): 55-9. doi: 10.1007/BF00395897. PMID: 24249268.

    [11]

    Alexova R, Fujii M, Birch D, et al. Iron uptake and toxin synthesis in the bloom-forming Microcystis aeruginosa under iron limitation [J]. Environmental Microbiology, 2011, 13(4): 1064-1077. doi: 10.1111/j.1462-2920.2010.02412.x

    [12]

    Martin-Luna B, Sevilla E, Hernandez J A, et al. Fur from Microcystis aeruginosa binds in vitro promoter regions of the microcystin biosynthesis gene cluster [J]. Phytochemistry, 2006, 67(9): 876-881.

    [13]

    Christiansen G, Dittmann E, Ordorika L V, et al. Nonribosomal peptide synthetase genes occur in most cyanobacterial genera as evidenced by their distribution in axenic strains of the PCC [J]. Archives of Microbiology, 2001, 176(6): 452-458.

    [14]

    Dittmann E, Fewer D P, Neilan B A. Cyanobacterial toxins: biosynthetic routes and evolutionary roots [J]. FEMS microbiology Reviews, 2013, 37(1): 23-43. doi: 10.1111/j.1574-6976.2012.12000.x

    [15]

    Caboche S, Leclère V, Pupin M, et al. Diversity of monomers in nonribosomal peptides: towards the prediction of origin and biological activity [J]. Journal of Bacteriology, 2010, 192(19): 5143-5150. doi: 10.1128/JB.00315-10

    [16]

    Calcott M J, Ackerley D F. Genetic manipulation of non-ribosomal peptide synthetases to generate novel bioactive peptide products [J]. Biotechnology Letters, 2014, 36(12): 2407-2416. doi: 10.1007/s10529-014-1642-y

    [17]

    Velkov T, Lawen A. Non-ribosomal peptide synthetases as technological platforms for the synthesis of highly modified peptide bioeffectors-cyclosporin synthetase as a complex example [J]. Biotechnology Annual Review, 2003(9): 151-197.

    [18]

    Neilan B A, Dittmann E, Rouhiainen L, et al. Nonribosomal peptide synthesis and toxigenicity of cyanobacteria [J]. Journal of Bacteriology, 1999, 181(13): 4089-4097. doi: 10.1128/JB.181.13.4089-4097.1999

    [19]

    Pearson L A, Barrow K D, Neilan B A. Characterization of the 2-hydroxy-acid dehydrogenase McyI, encoded within the microcystin biosynthesis gene cluster of Microcystis aeruginosa PCC7806 [J]. Journal of Biological Chemistry, 2007, 282(7): 4681-4692. doi: 10.1074/jbc.M606986200

    [20]

    Rueckert A, Cary S C. Use of an armored RNA standard to measure microcystin synthetase E gene expression in toxic Microcystis sp. by reverse-transcription QPCR [J]. Limnology & Oceanography Methods, 2009, 7(7): 509-520.

    [21]

    Alexova R, Dang T C, Fujii M, et al. Specific global responses to N and Fe nutrition in toxic and non-toxic Microcystis aeruginosa [J]. Environmental Microbiology, 2016, 18(2): 401-413.

    [22]

    Stachelhaus T, Mootz H D, Bergendahl V, et al. Peptide bond formation in nonribosomal peptide biosynthesis catalytic role of the condensation domain [J]. Journal of Biological Chemistry, 1998, 273(35): 22773-22781. doi: 10.1074/jbc.273.35.22773

    [23]

    Walls J T, Wyatt K H, Doll J C, et al. Hot and toxic: Temperature regulates microcystin release from cyanobacteria [J]. Science of the Total Environment, 2018(610): 786-795.

    [24]

    Zilliges Y, Kehr J C, Meissner S, et al. The cyanobacterial hepatotoxin microcystin binds to proteins and increases the fitness of Microcystis under oxidative stress conditions [J]. PLoS One, 2011, 6(3): e17615. doi: 10.1371/journal.pone.0017615

    [25]

    Tan X F, Dai Y N, Zhou K, et al. Structure of the adenylation–peptidyl carrier protein didomain of the Microcystis aeruginosa microcystin synthetase McyG [J]. Acta Crystallographica Section D: Biological Crystallography, 2015, 71(4): 873-881. doi: 10.1107/S1399004715001716

    [26]

    Rausch C, Hoof I, Weber T, et al. Phylogenetic analysis of condensation domains in NRPS sheds light on their functional evolution [J]. BMC Evolutionary Biology, 2007, 7(1): 78. doi: 10.1186/1471-2148-7-78

  • 期刊类型引用(11)

    1. 朱庭耀,李冬春,向坤,梁超,朋泽群,赵建,郭建林,叶章颖. 流速对鱼类的影响及其在循环水养殖中的应用. 水生生物学报. 2025(01): 211-221 . 本站查看
    2. 楚天舒,赖世宣,杨行,赵智强,郭青霞. 基于地表水目标水质的畜禽粪便水环境承载力估算. 中国农业大学学报. 2024(01): 146-156 . 百度学术
    3. 蒋文枰,程顺,刘士力,郑建波,迟美丽,杭小英,彭苗,李飞. 翘嘴鲌及翘嘴鲌“全雌1号”氨氮胁迫下的生理应答反应及耐受性分析. 四川农业大学学报. 2024(01): 134-139 . 百度学术
    4. 田海军,姜汉军,杨铁柱,刘加慧. 十二烷基苯磺酸钠对黄颡鱼免疫相关酶活性的影响. 水产学杂志. 2024(02): 55-60 . 百度学术
    5. 郭红会,王勋伟,葛恒,王羽慧,李怡雯,李欣月,邹桂伟,梁宏伟,李莉. 皮质醇(COR)介导的氨氮抑制团头鲂免疫功能. 淡水渔业. 2024(03): 60-68 . 百度学术
    6. 朱俊鹏,陆根海,施永海,李雪松,曹祥德,李二超. 氨氮和亚硝酸盐氮对美洲鲥幼鱼的急性胁迫研究. 水产养殖. 2024(06): 24-29 . 百度学术
    7. 李建平,胡强,夏英,张桂元,湛栋,李永吉. 氨氮胁迫对两种泥鳅急性毒性及抗氧化功能的影响. 渔业研究. 2024(03): 254-259 . 百度学术
    8. 李梦娇,王倩,张婷,任金亮,王志远,赵蔚蓝,王恒杰,王灿莉,袁向阳. 氨氮胁迫对团头鲂生长、抗氧化和免疫的影响. 水产科学. 2024(04): 640-647 . 百度学术
    9. 胡雅菲,贾欣,耿志远,陈晨,张月,刘少贞,宋晶. 氨氮对幼鲫鳃组织及其非特异性免疫指标的影响. 淡水渔业. 2024(05): 59-68 . 百度学术
    10. 聂丽玲,杨占虎,张卿,鲍瑞峰,朱传坤,李礼,朱晓鸣,辛未,张磊. 低浓度氨氮预适应后高氨氮暴露对黄颡鱼鳃组织结构、免疫指标及相关基因的影响. 水生生物学报. 2024(11): 1812-1821 . 本站查看
    11. 刘可欣,林旺,罗惠敏,罗玥,林诗婷,张运生,杨品红. 氨氮胁迫对青鲫幼鱼急性毒性和抗氧化功能的影响. 湖南文理学院学报(自然科学版). 2023(02): 57-61+87 . 百度学术

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出版历程
  • 收稿日期:  2022-05-16
  • 修回日期:  2022-08-25
  • 网络出版日期:  2022-08-31
  • 发布日期:  2023-07-14

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